《歐洲藥典》第2.6.7章（EP 2.6.7）以及《日本藥典》第G3章（JP G3），詳細描述了如qPCR等方法、基于核酸擴增技術（NAT）的支原體檢測。這些藥典中指出，如果需要用NAT法替代傳統方法，要求顯示每毫升樣品體積(CFU/ml)中10個菌落形成單位的檢測，即靈敏度達到10CFU/ml。這種靈敏度驗證是方法驗證的一條必經之路。

然而，由于一些細胞培養實驗室、研究機構、生產線不配備符合支原體培養條件的標準化微生物實驗室，很難實現在實驗室中培養或處理活的、用于靈敏度測試的支原體菌落。10CFU靈敏度標準品（不可逆滅活的支原體）便應運而生。為了保障滅活菌株的使用效果，德國Minerva Biolabs潛心研制，將先進的凍干粉技術用于支原體檢測標準品的生產過程中，盡可能保障在運輸過程中不破壞其生物活性，能夠幫助科研人員實現更高靈敏度的檢測驗證。

產品雖好，但也需要配合科學的使用方法才能事半功倍。本期內容，我們就來一起探討，支原體檢測標準品的科學使用方法。

一、標準品的溫度平衡

標準品在不同溫度下，可能會表現出不同的特性，忽略溫度平衡可能會導致實驗結果的不穩定性。

因此，在復溶前需對標準品進行溫度平衡處理，以降低因溫度突變引起的損壞或變性的可能性，使標準品溫度逐漸接近溶解時的溫度，減少溫度變化造成的不良影響，避免基質溫度過低導致凍干粉溶解困難，保證標準品在復溶過程的穩定性和活性，提高實驗靈敏度。

具體做法是，在復溶前，需要將標準品從2-8℃環境中轉移至室溫環境下，對其進行溫度平衡，待所有成分與室溫一致時，才可進行下一步操作。

溫度平衡好后，將標準品放入低速離心機內，短暫離心，通過旋轉，將附著在管壁的凍干粉末甩至瓶底，保障復溶后物質濃度穩定。

小心打開標準品離心管，沿管壁向每個離心管中，加入經過室溫平衡的待檢樣品的同款基質1ml，室溫孵育5分鐘。不建議用移液器反復吹打，容易造成試劑的浪費。孵育好后，可以漩渦10秒，然后再低速離心機內旋轉5秒，將管壁的液體甩下去。

二、支原體標準品DNA提取與擴增

滅活支原體含有一部分膽固醇和脂質，對核酸擴增實驗會造成不同程度的影響。因此，在檢測前，需要對支原體標準品進行DNA提取，以純化標準品中的DNA。并去除可能存在的 PCR 抑制物質，從而提高PCR反應的靈敏度和特異性。此外，經過提取的支原體DNA更容易被PCR擴增，因為純化后的DNA更容易與引物結合，并且不易受到來自樣品基質的干擾。推薦使用配套的Venor®GeM Sample Preparation Kit支原體提取試劑盒（貨號：56-1010）。

根據提取試劑盒的要求，取適量標準品溶液進行DNA提取，隨后再進行正式的qPCR檢測實驗。

三、支原體標準品DNA分裝與儲存

很多實驗人員習慣將用不完的標準品試劑，在復溶后進行冷藏或冷凍儲存，其實這樣的操作會在很大程度上，降低標準品的生物活性，影響檢測的靈敏度，主要影響因素有以下幾點：

1、降低標準品的生物活性：反復凍融會導致支原體標準品中核酸等分子結構發生變化或損壞，降低了標準品的活性、影響其穩定性。這些變化可能會在標準品的后續使用過程中，導致實驗結果出現較大波動，影響實驗結果的準確性。

2、污染風險增加：反復凍融會增加標準品接觸外界環境的機會，提高了諸如細菌、真菌等微生物污染，或者其他化學物質的潛在的污染風險。

因此，為了確保支原體標準品的活性、穩定性和準確性，我們建議，盡量在復溶后將溶液一次性全部用完，以避免反復凍融帶來的潛在負面影響。

另外需要注意的是，在任何情況下，都不建議將使用前、還未復溶的標準品進行冷凍保存。

相關人員的研究顯示，在2-8℃環境中，德國MB公司的凍干粉狀態穩定，在有效期內保存得當的情況下均可放心使用，是一種經濟實惠又穩健的儲存方式。

如果將凍干粉置于-20℃環境下，可能會使水分重新進入粉末中，導致標準品重新溶解。這個過程中，支原體標準品的結構和活性也會受到影響，從而降低其可靠性和有效性。此外，冷凍過程中可能會引起凍融循環，導致支原體標準品穩定性下降，影響其在實驗中的使用效果。